Реферат: Анестезия у экспериментальных животных - текст реферата. Скачать бесплатно.
Банк рефератов, курсовых и дипломных работ. Много и бесплатно. # | Правила оформления работ | Добавить в избранное
 
 
   
Меню Меню Меню Меню Меню
   
Napishem.com Napishem.com Napishem.com

Реферат

Анестезия у экспериментальных животных

Банк рефератов / Медицина и здоровье

Рубрики  Рубрики реферат банка

закрыть
Категория: Реферат
Язык реферата: Русский
Дата добавления:   
 
Скачать
Архив Zip, 25 kb, скачать бесплатно
Заказать
Узнать стоимость написания уникального реферата

Узнайте стоимость написания уникальной работы

РЕФЕРАТ ТЕМА: АНЕСТЕЗИЯ У ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТН ЫХ План: Вступление 1. Оценка исходного состояния животного как объекта для общей анестезии. 2. Фармакологические средства, применяемые для общей анестезий у экспери ментальных животных. 3. Препараты, используемые для анестезиологического пособия у экспериме нтальных животных Список литературы Вступление Прогресс современной медицины во многом обязан э кспериментальным исследованиям. В полной мере это относится к хирургии, анестезиологии и реаниматологии, бурное развитие которых немыслимо бе з многочисленных сложнейших острых опытов. Тем не менее, клиническая ане стезиология все еще значительно опережает разработку методов анестези и у экспериментальных животных. В нашей стране и за рубежом запрещено проведение опытов без адекватной а нестезии, в условиях тотальной миорелаксации без обезболивания и др. Авт оры, публикуя свои результаты, должны указывать не только вид и количест во использованных животных, но и применявшиеся виды обезболивания и эвт аназии. Вместе с тем опыт высококвалифицированного анестезиолога-клинициста ч асто оказывается недостаточным для решения задач, которые возникают пр и анестезиологическом обеспечении современных хирургических, патофиз иологических, анестезиологических и других экспериментов. Это связано со значительными физиологическими особенностями животных различных в идов и пород, возраста и пола, различиями в переносимости общей анестези и и чувствительности к анестезиологическим препаратам, особыми методи ческими приемами, аппаратурой и инструментарием, использование которы х необходимо. Незнание или недоучет этих особенностей могут обусловить выраженные нарушения гомеостаза у животных, что в свою очередь затрудня ет или делает невозможной правильную интерпретацию результатов исслед ований. 1. Оценка исходного состояния животного как объект а для общей анестезии Отбор и подготовка животных к проведению экспери мента имеют важное значение. Выбор животных того или иного вида зависит прежде всего от задач, стоящих перед экспериментатором. Хирургические о пыты, как правило, проводят на крупных животных (собаки, телята, обезьяны, свиньи), в то время как для изучения фармакологических препаратов более удобны мелкие лабораторные животные (мыши, крысы, морские свинки). Опреде ленные ограничения в выборе животных возникают в связи с размерами, осна щенностью и санитарно-техническими условиями лабораторий. Принципиаль но возможно моделирование разнообразных патофизиологических состоян ий у животных разных видов вплоть до рептилий. Однако в настоящее время н акоплен опыт, который позволяет осуществить наиболее адекватный целям эксперимента выбор доступных животных. Так, на собаках наиболее целесообразно изучать влияние ингаляционных и неингаляционных анестетиков на гемодинамику большого и малого кругов, эффекты разнообразных фармакологических средств при общей анестезии, патофизиологию искусственного кровообращения, метаболизм миокарда и л егких, различные варианты клинической смерти и оживления, ИВЛ и др. Собак и остаются наиболее часто изучаемыми лабораторными животными [Осипов В. П., 1976; Степанян Е.П. и др., 1978; Герасимов Н.М. и др., 1983; Гиммельфарб Г.Н., Пермяков Н.К. и др., 1983; Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Однако при выборе собаки в качестве объекта эксп еримента следует помнить, что беспородные собаки более выносливы в отли чие от породистых, которые высокочувствительны к общим анестетикам и др угим фармакологическим препаратам, плохо переносят хирургическую трав му в условиях лабораторного содержания. Для сложных и длительных хирург ических экспериментов более подходят молодые (2--5 лет) беспородные собаки. На кошках и кроликах чаще всего изучают фармакологические эффекты анес тетиков, анальгетиков и миорелаксантов, влияние их на центральную и пери ферическую нервную систему, изменения мозгового кровотока и метаболиз ма в условиях общей анестезии, закономерности восстановления мозговых структур при реанимации, анальгетические эффекты перидурально вводимы х препаратов [Гиммельфарб Г.Н., 1984; Сачков В.И. и др., 1986; Aoki M. et al., 1986; Gibbin J. P. et al., 1986; Sheller M. et al., 1986]. Крысы и мыши являются удобной моделью для изучения аналгезирующих и ней ролептических препаратов, токсических и тератогенных эффектов анестет иков, влияния последних на метаболизм мозга, печени и других органов [Vina J. et al., 1986; Wood M. et al., 1986]. Достаточно часто на мелких лабораторных животных моделир уют также различные варианты клинической смерти и оживления организма [ Пермяков Н.К. и др., 1983]. Подготовку экспериментальных животных к общей анестезии следует начин ать с внешнего осмотра. При этом можно составить определенное представл ение о физическом состоянии животного, обнаружить дефекты, связанные с е го содержанием. Внимание следует обращать на возраст и поведение животн ого, его упитанность и массу тела, состояние глаз, зубов, кожного покрова, шерсти, частоту и характер дыхания, интенсивность слюноотделения. Напри мер, возраст собак можно ориентировочно определить по зубам, которые к 4--5 годам утрачивают белизну и начинают стираться. Кроме того, для молодых ж ивотных характерно горизонтальное направление роста шерсти на бедрах. Тщательный осмотр помогает выявить признаки заболеваний, которые нере дки у лабораторных животных. Многие животные страдают хроническими заб олеваниями дыхательных путей и почек, специфическими инфекциями. Описа ны даже случаи приобретенных пороков сердца [Holland A., 1973]. Для хронических эксп ериментов целесообразно отбирать животных, прошедших 10-- 12-дневную обсерв ацию. В этом периоде они имеют возможность адаптироваться к условиям сод ержания в виварии, рациону питания. Их вакцинируют против чумы, вирусног о гепатита, осуществляют некоторые лабораторные исследования (анализ к рови). На протяжении всего времени обследования необходим постоянный ко нтроль за общим состоянием животного с целью выявления возможных насто раживающих изменений или признаков заболевания. Физикальное обследование животных вызывает естественные затруднения у анестезиолога-клинициста. Вместе с тем при составлении плана анестези ологического пособия экспериментальным животным необходимо знать осо бенности системы внешнего дыхания и кровообращения особей различных в идов. Такие знания не только помогают выявить животных с каким-либо забо леванием, но и оценивать адекватность общей анестезии. При выборе объекта эксперимента и подготовке к анестезиологическому п особию и ИВЛ необходимо учитывать некоторые анатомо-физиологические о собенности животных различных видов. Например, у собак очень тонкая плев ра, поэтому при вскрытии в ходе эксперимента одной из плевральных полост ей часто возникает двусторонний пневмоторакс [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Сложная анатомия дыхательных путей у кроликов затрудняем интубацию тр ахеи и ИВЛ, однако у них от грудины к перикарду идет мембранозная перегор одка, которая дает возможность создать доступ к органам средостения без пневмоторакса [Holland A., 1973]. Кроме того, у животных этого вида отсутствует рвотн ый центр и не возникает соответствующая реакция па рвотные средства. У жвачных животных сильно развиты бронхиальные железы, поэтому веществ а, усиливающие их секрецию, следует использовать с особой осторожностью . Напротив, у свиней бронхиальные железы мало чувствительны к стимулирую щим фармакологическим препаратам [Мозгов И. Е., 1979]. Истощенные животные значительно хуже переносят общие анестетики и дру гие лекарственные средства, поэтому если анестезиологическое пособие приходится оказывать плохо упитанному животному, дозы препаратов для п ремедикации и анестетиков должны быть снижены. Это относится и к утомлен ным животным. В связи с этим за 4--6 дней до эксперимента животное следует пе ревести на высококалорийное питание. Для повышения резистентности к ин фекции в рацион собак целесообразно включать пищевые дрожжи (около 100 г в сутки) и рыбий жир (20 г). Перестают кормить животных за 15--18 ч до эксперимента. Анестезиолог, проводящий пособие, должен дифференцированно подбирать дозы медикаментозных средств для особей разного возраста. Указанные в с пециальной литературе и настоящем руководстве дозы препаратов (см. ниже ) используются, как правило, у половозрелых молодых животных. Старые живо тные значительно хуже переносят общую анестезию, особенно с использова нием мощных ингаляционных анестетиков, например фторотана. У старых соб ак, особенно породистых, комбинированную анестезию рекомендуется пров одить ингаляционными и неингаляционными анестетиками в небольших доза х в сочетании с наркотическими анальгетиками. При этом удается снизить т оксический эффект препаратов [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Определенные сложност и могут возникнуть при работе с неполовозрелыми животными, которые чрез вычайно чувствительны к анестезиологическим средствам. В подобных сит уациях многое зависит от индивидуального опыта экспериментатора, умен ия подобрать минимальную эффективную дозу анестетика. Для экспериментальных моделей в хирургии, анестезиологии и реаниматол огии половые отличия не имеют существенного значения, поскольку особи р азного пола практически одинаково реагируют на разнообразные медикаме нтозные средства. Однако у беременных животных симпатомиметики и вещес тва, вызывающие увеличение притока крови к сосудам тазовой области, могу т обусловить аборт. Наконец, не следует забывать об изменениях эмоционального состояния жи вотных при переводе из вивария в непривычную обстановку операционной, в ответ на подготовительные манипуляции (привязывание, подключение датч иков, венепункция и т.д.). Нежелательные реакции эффективно предотвращае т адекватная премедикация. Однако в ряде случаев эксперимент необходим о проводить без премедикации. Избежать гемодинамических и метаболичес ких сдвигов у подопытных животных можно, осуществляя предварительную т ренировку в условиях операционной на протяжении 2 нед [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. 2. Фармакологические средства, применяемые для об щей анестезий у экспериментальных животных Для проведения анестезиологического пособия экс периментальным животным в настоящее время используют широкий набор ле карственных средств, традиционных для клинической анестезиологии. С пр актической точки зрения наиболее важны сведения об оптимальных дозах п репаратов для премедикации, вводной и основной анестезии у определенно го вида животных. Атропин широко используют для премедикации. В целом действие атропина н а животных аналогично его эффекту у человека. Он угнетает саливацию и се крецию носоглоточной слизи, расширяет бронхиолы, дает положительный хр онотропный эффект, быстро всасывается при подкожном введении, оказывае т достаточно широкое терапевтическое действие. Мелкие млекопитающие м енее чувствительны к атропину, чем крупные животные и человек Морфин в экспериментальной анестезиологии используют для премедикаци и. У большинства животных он вызывает эйфорию, дает седативный эффект. Ан альгетические свойства морфина различны у животных разных видов [Мозго в И.Е., 1979]. Препарат легко всасывается из подкожной жировой клетчатки. Возм ожно внутримышечное введение его. У некоторых животных действие морфин а имеет специфические особенности. Так, у кошек легко возникает передози ровка, сопровождающаяся картиной «маниакального возбуждения»: обостря ются зрение, слух, осязание, затем возникает беспокойство, возрастают по движность и агрессивность. Вслед за этим чувствительность снижается, ра звиваются судороги, которые являются предвестниками гибели животного. У собак морфин наряду со снижением болевой чувствительности вызывает у силение саливации, рвоту и дефекацию, что обусловливает целесообразнос ть его введения за 30--40 мин до предстоящей анестезии. Таким образом, с одной стороны, морфин обеспечивает быстрое и хорошо контролируемое опорожне ние желудка и кишечника, что страхует от рвоты и регургитации при вводно й анестезии. С другой стороны, препарат может вызвать быстрое обезвожива ние, метаболический ацидоз и депрессию дыхания. Отрицательные свойства морфина можно несколько ослабить сочетанным применением атропина. Тем не менее использование морфина в экспериментальной анестезиологии, ос обенно в качестве компонента для поддержания общей анестезии, следует о граничивать [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. В качестве антагониста при передозировк е морфина используют налорфин или аналогичные препараты. Промедол можно включать в схему премедикации кошек и собак вместо морфи на. Препарат менее токсичен, в меньшей степени угнетает дыхание, однако о бладает более слабыми анальгетическими свойствами. Может вводиться по дкожно, внутримышечно и внутривенно. Достаточно широкое распространение в современной экспериментальной а нестезиологии получил метод нейролептаналгезии, препараты для которой могут использоваться как в качестве премедикации, так и для поддержания общей анестезии у различных животных. Как правило, фентанил и дропе-ридо л вводят одновременно. У крупных животных, если планируется ИВЛ, осущест вляют внутривенное введение. У мелких животных препараты для нейролепт аналгезии можно применять внутриперитонеально с сохранением спонтанн ого дыхания. Показано, что использование для премедикации у собак с масс ой тела от 18 до 25 кг фентанила в количестве 6--8 мл 0,05% раствора и дроперидола в к оличестве 8--10 мл 0,25% раствора обеспечивает выраженный седативный эффект бе з существенных нарушений дыхания и кровообращения, но аналгезия при это м выражена умеренно [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Введение фентанила без дроперидо ла вызывает у собак нежелательные изменения гемодинамики малого круга. Аминазин у животных дает нейролептический эффект (расслабление скелет ной мускулатуры, снижение реакций на внешние раздражения, болевой и такт ильной чувствительности, сон). Однако, как и у человека, у большинства эксп ериментальных животных после введения аминазина развиваются тахикард ия и артериальная гипотония. Препарат используют для премедикации у раз личных животных -- кошек, собак, свиней, травоядных, причем последние наибо лее чувствительны к нему. Седативный эффект аминазина усиливается при к омбинировании с антигистаминными препаратами. Однако отрицательное вл ияние на гемодинамику ограничивает использование аминазина, особенно у ослабленных, истощенных и старых животных. Диазепам в последние годы нашел применение как для премедикации, так и д ля вводной анестезии у собак. Внутривенное введение 5--10 мг препарата сопр овождается снижением артериального давления (не более 15% от исходного) пр и практически неизмененных частоте сердечных сокращений, минутном и уд арном объемах сердца [Бунятян А.А. и др., 1983]. В ряде случаев после внутривенно го введения диазепама можно произвести интубацию трахеи без дополните льного введения барбитуратов и миорелаксантов [Гиммельфарб Г Н 1984]. В экспериментальной анестезиологии для индукции в анестезию различных животных широко используют производные барбитуровой кислоты. Достоин ства и недостатки этих препаратов, выявленные при клинических исследов аниях, характерны и при использовании в эксперименте. Этаминал-натрий (пентобарбитал) используют как у мелких животных (внутримы шечно, интраперитонеально, внутрибрюшинно), так и у крупных (как правило, в нутривенно). У собак обычно используют 6,5--7% раствор пен-тобарбитала. В каче стве растворителя применяют смесь изотонического раствора натрия хлор ида (стабилизатор) и пропиленгликоля в количестве '/ю объема изотоническ ого раствора натрия хлорида. Такая методика дает возможность приготови ть заранее большое количество раствора и хранить его в холодильнике. Вну тривенно раствор вводят медленно. Животное засыпает через 1--2 мин. Анестез ия продолжается длительное время. В редких случаях требуется повторное введение препарата (5--10 мг/кг). Полное пробуждение наступает через 24--26 ч. При п робуждении бывает рвота. Фенобарбитал используют в ряде случаев для обезболивания мелких живот ных. Препарат вводят в виде раствора интраперитонеально в дозе 45-- 50 мг/кг и ли внутривенно в дозе 30--35 мг/кг. Длительность анестезии может достигать 8 ч. Тиопентал-натрий и гексенал используют для премедикации, вводной а нестезии, а также в ряде случаев для поддержания анестезии. Мелким млеко питающим их можно вводить интраперитонеально и внутривенно, крупным, ка к правило, внутривенно. У собак возможны премедикация и индукция в анест езию путем внутримышечного введения 400--1000 мг тиопентал-натрия. Чаще препар аты используют в виде 1--2,5% раствора, вводимого внутривенно. Животное засып ает через 1--2 мин. Продолжительность анестезии 20--45 мин. Описана индукция в ан естезию путем введения 2,5% раствора гексенала внутри-плеврально или внут рилегочно [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Наркотический эффект при этом достигается почти мгновенно, однако резко выражена депрессия дыхания. Длительная вн утривенная анестезия с помощью капельной инфу-зии 2,5% раствора одного из п репаратов технически проста и эффективна. Однако стабильный уровень ан естезии можно поддержать, только имея достаточный опыт работы с этими об щими анестетиками. При повторных введениях препаратов период выхода жи вотных из состояния анестезии удлиняется. Во всех случаях применения ти опентал-натрия или гексенала у крупных млекопитающих необходимо преду смотреть возможность интубации трахеи и ИВЛ. Натрия оксибутират и пропанидид применяют для общей анестезии животны х относительно редко. Возможна индукция в анестезию путем внутривенног о введения их кошкам, собакам, свиньям. Наркотическое состояние развивае тся относительно медленно, поэтому целесообразно сочетание названных препаратов с анальгетиками или атарактиками (пропанидид и фентанил, нат рия оксибутират и диазепам). Кетамин в настоящее время нашел широкое распространение для обезболив ания экспериментальных животных. Начало кетаминовой анестезии у мышей и крыс сопровождается кратковременным снижением артериального давлен ия, которое затем сменяется подъемом. Частота сердечных сокращений увел ичивается. Существенных изменений дыхания у этих видов животных не прои сходит [Severe Т., Bloggy С., 1973J. Депрессия дыхания и сердечной функции возможна у морс ких свинок [Chamberlain I. et al., 1981]. У собак кетамин является одним из лучших препаратов для премедикации. Внутримышечное введение 50--100 мг кетамина с 15--20 мг диазепа ма обеспечивает достаточно глубокий сон; при этом существенных сдвигов дыхания и кровообращения не происходит. Внутривенное введение при инду кции в анестезию у собак сопровождается сохранением спонтанного дыхан ия, повышением частоты сердечных сокращений, умеренным увеличением сер дечного выброса и артериального давления, некоторым подъемом давления в легочной артерии. Однако для интубации трахеи необходимо введение деп оляризующих миорелаксантов, так как сохраняются рефлексы гортани и над гортанника [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Гемодинамический эффект кетамина снижае тся при сочетанием использовании его с диазепамом. После внутримышечно го введения достаточно эффективная анестезия длится 25--30 мин. Поддержание общей анестезии возможно с помощью дробного внутривенного введения не больших доз (2--3 мг/кг). В последние годы кетамин находит все более широкое п рименение для анестезиологического обеспечения экспериментов на круп ных животных (телята, свиньи, лошади и др.). Апробировано его эпидуральное введение у лабораторных животных [Сачков В.И. и др., 1986]. Этомидат апробирован для общей анестезии у мышей [Gomwolk N., Healing Т., 1981]. Его можно вв одить внутривенно или внутрибрюшинно в растворе пропиленгликоля (2 мг на 1 мл раствора). Альтезин успешно используют для общей анестезии у мелких и средних лабо раторных животных [Davis В., 1976; Bailey С. et al., 1977]. Альтезин не оказывает существенного вл ияния на артериальное давление, но может уменьшать частоту пульса у крыс . В организме мышей и кроликов он подвергается быстрому метаболизму, при повторных введениях не вызывает кумуляции. Рациональное использование миорелаксантов в экспериментальной анест езиологии представляет собой достаточно сложную задачу. По сравнению с человеком животные значительно более чувствительны к этим препаратам. При введении миорелаксантов животным более выражена ганглионарная бло када, происходит значительный выброс гистамина. Их использование целес ообразно и оправдано при многокомпонентной общей анестезии, т.е. тогда, к огда необходима релаксация поперечнополосатой мускулатуры при обязат ельной ИВЛ. Применяя миорелаксанты у экспериментальных животных, следу ет помнить, что они не подавляют функций ЦНС и не обладают анальгетическ ими свойствами. Например, интубация трахеи у собак после введения деполя ризующего миоре-лаксанта без анестезии сопровождается выраженными гем одинамическими сдвигами [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Дитилин используют для интубации трахеи у разнообразных животных. При этом дозы, как правило, в 10 раз меньше, чем у человека. Необход имо учитывать, что введение дитилина или аналогичных препаратов (листен он, мио-релаксин, сукцинилхолин) даже в дозе 0,1 мг/кг может вызвать у собак п ролонгированную релаксацию. Тубокурарина хлорид применяют в ряде случаев для обездвижи-вания мелки х (крысы) и крупных (свиньи) лабораторных животных. Вводится внутривенно, п ричем дозы у крыс соответствуют используемым в клинической практике, а у свиней значительно выше [Сондоре А.А., 1978]. У различных животных можно использовать недеполяризующий миорелаксан т диплацин. Для собак, кошек и кроликов рекомендуемая доза составляет 0,25--0,3 мг/кг [Мозгов И. Е., 1979]. Известно, что по сравнению с другими миорелаксантами у животных менее вы раженный ганглиоблокирующий и гистаминлибераторный эффект дает панкуроний . Тем не менее, особенно в хронических эксперимента х, недеполяризующие миорелаксанты использовать не следует В частости, у собак они вызывают чрезвычайно длительное апноэ. Предполагают, что это я вление связано с холинэстеразопенией [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. В экспериментальной анестезиологии используют большой набор жидких (х лороформ, эфир, фторотан, метоксифлуран, энфлуран, изофлуран) и газообраз ных (закись азота, циклопропан) ингаляционных анестетиков. Вместе с тем з начимость этих препаратов у лабораторных животных различных видов в на стоящее время существенно пересмотрена. Все реже используют ингаляцио нную моноанестезию. Клиническая картина такой общей анестезии у различ ных животных сходна и, как правило, сопровождается тяжелыми нарушениями жизненно важных функций организма, особенно во время индукции [Мозгов И. Е., 1979]. В опытах на мелких и средних лабораторных животных использование ин галяционных анестетиков затруднено в связи с отсутствием специальных испарителей и дозиметров. Хлороформ применяют для вводной и базисной анестезии у мышей, крыс, морс ких свинок, сурков, хомяков. Животных помещают под стеклянный колокол, гд е находится вата, смоченная анестетиком. Естественно, в таких условиях т очное дозирование невозможно и летальность животных может быть высока. До недавнего времени хлороформ достаточно широко использовали в ветер инарной практике [Мозгов И. Е., 1979]. Установлено, что свиньи относительно хор ошо переносят анестезию хлороформом в отличие от собак и лошадей. У соба к в.1 стадии анестезии возможна смерть вследствие рефлекторной остановк и сердца и дыхания. Описана методика поддержания общей анестезии у собак с помощью 1,2--1,5 об.% хлороформа при газовом потоке 6 л/мин (4 л закиси азота и 2 л к ислорода), обеспечивающая адекватную защиту организма животных от знач ительной операционной травмы [Гиммельфарб Г.Н., 1984]. Тем не менее хлороформ чрезвычайно токсичен как для животных, так и для экспериментатора. Его и спользование должно быть строго ограниченным. Эфир для наркоза менее то ксичен, чем хлороформ, оказывает более широкое терапевтическое действи е. У мелких лабораторных животных используется аналогично другим ингал яционным анестетикам. У собак может быть применен для индукции в анестез ию (5--6 об.% в потоке закиси азота с кислородом в соотношении 2:1). При этом остае тся достаточно выраженной стадия возбуждения, возможны гипертензия, та хикардия, различные аритмии. Для поддержания анестезии необходимо 2--4 об.% эфира в потоке закиси азота с кислородом. При использовании анальгетико в, гипнотиков, атарактиков можно снизить концентрацию эфира до 0,5--2 об.%. Тем не менее диэтиловый эфир все реже используют для анестезии из-за раздраж ения дыхательных путей, взрывоопасности, невозможности применять диат ермокоагуляцию. Циклопропан обладает только одним преимуществом -- быстрым введением в а нестезию и выходом из нее. Препарат дорог, взрывоопасен, применение его т ребует специального оборудования. Как и у человека, он вызывает сенсибил изацию миокарда к катехоламинам. Эти качества резко ограничивают испол ьзование циклопропана в экспериментах на животных. Метоксифлуран, применяемый в экспериментальной анестезиологии, облада ет рядом недостатков, главный из которых -- медленное введение в анестези ю и выход из нее. Методика применения аналогична таковой диэтилового эфи ра. Основные преимущества при использовании у лабораторных животных: вз рывобезопасность, отсутствие раздражающего действия на дыхательные пу ти и гиперсаливации, возможность поддержания постоянного уровня анест езии без интубации и ИВЛ. Вместе с тем у кошек метоксифлуран (1 об.%) в газово й смеси существенно снижает влияние ауторегуляторных симпатических ме ханизмов поддержания сосудистого тонуса, в связи с чем возможны нежелат ельные гемодинамические реакции [Jrestedt L., 1975]. Фторотан является распространенным препаратом для ингаляционной анес тезии у лабораторных животных, однако при использовании его необходимо иметь хорошо откалиброванный и точный испаритель. Установлены оптимал ьные дозы фторотана для различных животных. Для ингаляционной общей ане стезии у крыс необходимо 2--3 об.% фторотана в потоке смеси закиси азота с кис лородом в соотношении от 1:1 до 3:1. Для индукции в анестезию собак и свиней не обходимо 2--3 об.% препарата, подаваемого через специальную маску. Для подде ржания анестезии достаточно 1 об.%. При анестезии у крупных животных доза а нестетика должна быть в 1,5--2 раза выше, но при этом может усиливаться отрица тельное влияние, которое аналогично наблюдаемому в клинической анесте зиологии (снижение артериального давления, брадикар-дия, уменьшение сер дечного выброса). Закись азота у лабораторных животных менее эффективна по сравнению с че ловеком и приматами. При использовании закиси азота в качестве единстве нного анестетика очень трудно достичь необходимой глубины анестезии, е сли ее концентрация во вдыхаемой смеси менее 85%, а такие концентрации опас ны. Однако положительные свойства закиси азота проявляются при сочетан ии ее с другими, более сильными ингаляционными анестетиками, например фт оротаном, или анальгетиками. Для общей анестезии используют и некоторые другие неингаляционные (хло ралоза, уретан, аллобарбитал, дипидолор) и ингаляционные анестетики (три хлорэтилен, энфлуран, изофлуран) [Гиммельфарб Г.Н., 1984; Holland А., 1973; Folle I., Levensone R., 1976; Green M., 1976; Blitt С . et al., 1979]. При анестезиологическом обеспечении экспериментов на животных до статочно широко используют также антигистаминные препараты (димедрол, супрастин). Они дают умеренный седативный и гипнотический эффект, усилив ают действие анальгетиков и атарактиков. У собак для премедикации в соче тании с фентанилом и дроперидолом достаточно эффективна доза димедрол а 2--3 мг/кг внутримышечно. Телятам и овцам препарат можно вводить подкожно в количестве 0,3 мл/кг. Список литературы 1. Бунятян А.А., Мещеряков А.В., Цибуляк В.Н. Атаралгезия.-- Будапешт: Медицина, 1983. 171 с. 2. Герасимов Н.М., Гиммельфарб Г.Н., Назаро ва Т. А. Влияние анестезии и искусственн ого кровообращения на метаболизм гистамина и серотонина в эксперимент е // Мед. жури. Узбекистана. 1983. -№ 4. -- С. 32--35. 3. Гиммельфарб Г.Н. Анестезия у экспериментальных животных. Ташкент: ФАН, 1984. 144 с. 4. Мозгов И. Е. Фармакология.-- М.: Колос, 1979.--416 с. 5. Сачков В.И., Сухонощенко Л.М., Коган Е.А. и др. Эиидуральная аналгезия кетамином в эксперименте//Анест. и реаниматол. 1986. № 4.- С . 7--12. 6. Chamberlain I ., Seed R., Undre N . Myocardial depression by ketamine // Anesthesia. 1981.--Vol. 35. - P. 366-370. 7. Gibbin J.P., Hartung J., Cottrell J.E. ct al. Effect of vecuronium on intracranial pressure, mean arterial pressure and heart rate in cats // Brit. J. Anaesth. 1986. Vol. 58, N 54. P. 441 -- 443. 8. Gomwalk N., Healing T. Ftomidate: a valuable anesthetic for // Lab Animals 1981 Vol 15 P. 151 152 9. Scfieller M. S , Told М . М ., Drutimond J. С Isoflnrane, halotane and regional cerebral blood flow at various levels of PaCO, in rabbits // Anesthesiology. 1986. Vol. 64, N 5. P 598 604. 10. Vina J.R., Davis D. W., Hawkins R. A. The influence of nitrons oxide on nietionme, S-adcnosyemethionine and othe ammo acids//Anesthesiologv. 1986. Vol. 64, N 4. P. 490 495. 11. Wood M., Uctrecht J., Phyltlujon J.M. et al. The effect ol cemetidine on aneslhelic metabolism and toxity // Anaest. Analg/ - 1986. - Vol. 65, - P. 481-488.
1Архитектура и строительство
2Астрономия, авиация, космонавтика
 
3Безопасность жизнедеятельности
4Биология
 
5Военная кафедра, гражданская оборона
 
6География, экономическая география
7Геология и геодезия
8Государственное регулирование и налоги
 
9Естествознание
 
10Журналистика
 
11Законодательство и право
12Адвокатура
13Административное право
14Арбитражное процессуальное право
15Банковское право
16Государство и право
17Гражданское право и процесс
18Жилищное право
19Законодательство зарубежных стран
20Земельное право
21Конституционное право
22Конституционное право зарубежных стран
23Международное право
24Муниципальное право
25Налоговое право
26Римское право
27Семейное право
28Таможенное право
29Трудовое право
30Уголовное право и процесс
31Финансовое право
32Хозяйственное право
33Экологическое право
34Юриспруденция
 
35Иностранные языки
36Информатика, информационные технологии
37Базы данных
38Компьютерные сети
39Программирование
40Искусство и культура
41Краеведение
42Культурология
43Музыка
44История
45Биографии
46Историческая личность
47Литература
 
48Маркетинг и реклама
49Математика
50Медицина и здоровье
51Менеджмент
52Антикризисное управление
53Делопроизводство и документооборот
54Логистика
 
55Педагогика
56Политология
57Правоохранительные органы
58Криминалистика и криминология
59Прочее
60Психология
61Юридическая психология
 
62Радиоэлектроника
63Религия
 
64Сельское хозяйство и землепользование
65Социология
66Страхование
 
67Технологии
68Материаловедение
69Машиностроение
70Металлургия
71Транспорт
72Туризм
 
73Физика
74Физкультура и спорт
75Философия
 
76Химия
 
77Экология, охрана природы
78Экономика и финансы
79Анализ хозяйственной деятельности
80Банковское дело и кредитование
81Биржевое дело
82Бухгалтерский учет и аудит
83История экономических учений
84Международные отношения
85Предпринимательство, бизнес, микроэкономика
86Финансы
87Ценные бумаги и фондовый рынок
88Экономика предприятия
89Экономико-математическое моделирование
90Экономическая теория

 Анекдоты - это почти как рефераты, только короткие и смешные Следующий
- Подойди к ней, подойди! Ты же мужик, ты сможешь! - уговаривал я себя, с ненавистью смотря на курсовую.
Anekdot.ru

Узнайте стоимость курсовой, диплома, реферата на заказ.

Обратите внимание, реферат по медицине и здоровью "Анестезия у экспериментальных животных", также как и все другие рефераты, курсовые, дипломные и другие работы вы можете скачать бесплатно.

Смотрите также:


Банк рефератов - РефератБанк.ру
© РефератБанк, 2002 - 2016
Рейтинг@Mail.ru